快速取材,減少組織損傷:動物處死后或臨床樣本獲取后,需在 30 分鐘內完成取材(尤其對腦組織、肝臟等易自溶組織),避免組織細胞因缺氧、酶解出現形態(tài)改變。取材時使用鋒利的解剖刀(如櫻花 SAKURA 病理專用刀,貨號 S350),避免反復切割導致組織擠壓變形,切面需平整,厚度控制在 3-5 mm(過厚易導致冷凍不均,過薄易破碎)。
針對性去除雜質與多余組織:取材后需立即清除組織表面的血液、脂肪、筋膜等雜質(可用生理鹽水輕輕沖洗,避免用力擦拭)。例如,腦組織取材后需去除腦膜與血管,脂肪組織需剔除周邊結締組織,否則雜質會影響包埋劑與組織的結合,導致切片時雜質脫落形成空洞。
組織定向標記:若實驗需明確組織極性(如皮膚的表皮 - 真皮方向、腸道的黏膜 - 漿膜方向),取材后可用標記筆在組織特定部位做標記(選擇櫻花 SAKURA 低熒光標記筆,避免干擾后續(xù)免疫熒光實驗),或通過包埋時的擺放位置固定方向(如將表皮面朝下,便于切片時識別)。
選擇適配的固定方式:
若后續(xù)需進行 HE 染色、免疫組化,可采用 4% 多聚甲醛(PFA)室溫固定 15-30 分鐘(根據組織大小調整,如 1 cm3 組織固定 20 分鐘),固定后用 PBS 沖洗 3 次(每次 5 分鐘),去除殘留固定液,避免固定過度導致組織變硬、難切片;
若進行酶活性檢測、脂質染色,需避免固定,采用 “新鮮組織直接冷凍",但需在 - 80℃液氮中快速速凍(<5 分鐘),防止組織內水分形成大冰晶(大冰晶會破壞細胞結構,導致切片出現孔洞)。
低溫保護劑的合理使用:
對神經組織、軟骨等易脆組織,可在包埋前用 10%-20% 蔗糖溶液(溶于 PBS)4℃浸泡 2-4 小時(組織沉底即可),蔗糖可滲透至細胞內,降低組織冰點,減少冷凍過程中冰晶的形成,提升切片韌性。使用櫻花 SAKURA 高黏附型 OCT 包埋劑(貨號 4587)時,蔗糖處理后的組織黏附性可提升 20%,避免切片時組織與包埋劑分離。
根據實驗類型選對包埋劑型號:
常規(guī) HE 染色、組織形態(tài)觀察:選擇櫻花 SAKURA 常規(guī)型 OCT 包埋劑(貨號 4583),其低結晶配方可確保切片完整,性價比高;
免疫熒光、熒光原位雜交(FISH):必須選擇低熒光型 OCT 包埋劑(貨號 4585),避免包埋劑自身熒光干擾目標信號,實驗前可通過熒光顯微鏡預檢測(激發(fā)波長 488 nm 下,熒光強度應<50 RFU);
脂肪、軟骨、骨骼等特殊組織:優(yōu)先使用高黏附型 OCT 包埋劑(貨號 4587),其 APTES 黏附促進劑可增強組織與包埋劑的結合力,切片完整率提升至 85% 以上。
包埋劑提前預冷,避免氣泡產生:
包埋前 1 小時將 OCT 包埋劑放入 4℃冰箱預冷(無需冷凍,避免結晶),預冷后的包埋劑黏度更穩(wěn)定,傾倒時不易產生氣泡;
向包埋模具(如櫻花 SAKURA 一次性包埋盒,貨號 T200)中加入包埋劑時,需沿模具壁緩慢傾倒,若出現氣泡,可用移液器槍頭輕輕挑破,氣泡會導致切片出現 “空白區(qū)",影響觀察。
組織居中擺放,避免邊緣效應:
將處理好的組織放入包埋模具中央,確保組織四周均有 OCT 包埋劑包裹(包埋劑厚度≥2 mm),避免組織緊貼模具壁(模具壁冷凍速度快,易導致組織邊緣冷凍不均,切片時邊緣斷裂)。
對小組織(如直徑<2 mm 的淋巴結),可先用少量包埋劑在模具底部鋪一層薄墊,再將組織放在墊上,防止組織下沉至模具底部,導致切片時無法完整獲取組織。
梯度速凍,減少冰晶形成:
不建議將組織直接放入液氮中速凍(易導致組織表面瞬間結冰,內部水分無法及時排出,形成大冰晶),推薦 “梯度速凍法":先將包埋模具放入 - 20℃冷凍切片機冷凍室預冷 10 分鐘,待包埋劑表面凝固后,再轉移至 - 80℃冰箱冷凍 30 分鐘(或液氮上方 5 cm 處熏蒸 10 分鐘),使組織從外到內緩慢冷凍,冰晶直徑可控制在 5 μm 以下,避免細胞結構破壞。
根據組織類型調整冷凍溫度:
柔軟組織(如腦組織、肝臟):冷凍溫度控制在 - 18~-20℃,溫度過高易導致切片黏連在刀片上,溫度過低會使組織變脆,切片斷裂;
堅硬組織(如皮膚、軟骨):冷凍溫度需降至 - 22~-25℃,增強組織硬度,便于切片,但需避免溫度過低(<-30℃),否則組織會出現 “崩裂";
脂肪組織:因脂肪導熱性差,冷凍溫度需穩(wěn)定在 - 20℃,且冷凍時間需延長至 1 小時以上,確保脂肪凝固,否則切片時脂肪細胞易破裂,出現油滴。
動態(tài)調整溫度,避免溫度波動:
切片過程中,冷凍切片機的溫度會因開門取放樣品、刀片摩擦產熱出現波動(±2℃),需每隔 30 分鐘觀察溫度顯示,若波動超過 ±1℃,需暫停切片,待溫度穩(wěn)定后再繼續(xù)。使用櫻花 SAKURA 低結晶 OCT 包埋劑時,即使溫度有輕微波動,也能減少結晶產生,切片完整率保持在 90% 以上。
切片厚度選擇:適配實驗需求:
常規(guī)組織形態(tài)觀察(HE 染色):切片厚度 5-8 μm,過薄易破碎,過厚會導致細胞重疊,影響形態(tài)判讀;
免疫熒光實驗:切片厚度 3-5 μm,薄切片可減少抗體滲透時間,降低非特異性染色,同時減少 OCT 包埋劑用量,降低熒光干擾;
連續(xù)切片(如腦組織冠狀面連續(xù)切片):厚度控制在 5 μm,且需確保每片切片的厚度偏差<0.5 μm(可通過冷凍切片機的厚度校準功能實現),避免因厚度不均導致后續(xù)拼接困難。
切片速度:“慢切為主,勻速推進":
切片速度控制在 2-5 mm/s(根據組織硬度調整),柔軟組織需慢切(2 mm/s),避免組織拉伸變形;堅硬組織可稍快(5 mm/s),但需保持勻速,避免速度忽快忽慢導致切片出現 “波紋"。
切片時刀片需與組織切面呈 15°-20° 角(非垂直切割),角度過小易導致切片擠壓,角度過大易切斷組織,可通過調整冷凍切片機的刀片支架角度實現最佳切割角度。
根據組織類型選對刀片:
常規(guī)軟組織(肝臟、腎臟):選擇櫻花 SAKURA 高碳鋼刀片(貨號 S450),刀刃鋒利度高,可減少組織擠壓;
堅硬組織(皮膚、骨骼):使用碳化鎢刀片(貨號 S600),耐磨性強,使用壽命是高碳鋼刀片的 3 倍,避免因刀片磨損導致切片出現刀痕;
免疫熒光實驗:優(yōu)先選擇無熒光污染的刀片(如櫻花 SAKURA 低熒光刀片),避免刀片表面殘留的熒光物質干擾實驗結果。
刀片清潔與更換:避免交叉污染:
每切完一個樣品后,需用無塵紙蘸取無水乙醇輕輕擦拭刀片表面(從刀刃向刀背方向擦拭,避免劃傷刀刃),去除殘留的 OCT 包埋劑與組織碎屑,防止交叉污染;
當切片出現明顯刀痕、斷裂(排除組織與溫度問題)時,需立即更換刀片,一般情況下,高碳鋼刀片每切 50-100 張切片需更換,碳化鎢刀片可切 300-500 張切片。
載玻片預處理:增強黏附性:
貼片前需將載玻片清洗干凈(用洗潔精浸泡 30 分鐘,超聲清洗 10 分鐘,蒸餾水沖洗 3 次,烘干),對易脫落的組織切片(如皮膚、脂肪),可使用多聚賴氨酸包被載玻片(櫻花 SAKURA 多聚賴氨酸載玻片,貨號 M100),或在載玻片表面涂抹少量 10% 明膠溶液(晾干后使用),增強切片與載玻片的結合力,避免后續(xù)染色時切片脫落。
貼片溫度與時間:控制干燥速度:
貼片時將載玻片放在 37℃恒溫臺上(溫度不宜過高,避免組織變性),用鑷子輕輕夾取切片,使其平整地鋪在載玻片中央,避免褶皺;
貼片后在 37℃恒溫臺放置 15-20 分鐘(或室溫放置 30 分鐘),讓切片自然干燥,干燥過快會導致切片收縮,干燥過慢易滋生細菌,影響染色。
HE 染色切片:固定與脫包埋劑同步:
干燥后的切片可直接放入 4% 多聚甲醛中固定 10 分鐘(或放入甲醇中固定 5 分鐘),固定過程中 OCT 包埋劑會被固定液溶解,無需單獨脫包埋劑;
固定后用蒸餾水沖洗 3 次(每次 3 分鐘),去除殘留的固定液與溶解的 OCT 包埋劑,避免背景染色。
免疫熒光切片:溫和脫包埋劑,保護抗原:
因 OCT 包埋劑含聚合物,需先用 PBS 沖洗切片 5 分鐘(2 次),輕輕晃動容器,使包埋劑逐漸溶解;若包埋劑殘留較多,可在 PBS 中加入 0.1% Triton X-100(增強滲透性),室溫孵育 10 分鐘,再用 PBS 沖洗干凈;
脫包埋劑后需立即進行封閉(用 5% BSA 封閉 30 分鐘),避免組織抗原暴露時間過長導致降解,使用櫻花 SAKURA 低熒光 OCT 包埋劑時,脫包埋劑后的熒光背景可降低至 50 RFU 以下,無需額外處理。
可能原因:組織冷凍過度(溫度過低)、組織未做冷凍保護(如神經組織未用蔗糖處理)、包埋劑與組織結合不緊密;
解決方法:適當升高冷凍溫度(如從 - 25℃調至 - 20℃),對易脆組織進行蔗糖浸泡處理,更換櫻花 SAKURA 高黏附型 OCT 包埋劑,確保組織被包埋劑包裹。
可能原因:冷凍溫度過高(組織過軟)、切片速度過快、刀片角度不當;
解決方法:降低冷凍溫度(如從 - 18℃調至 - 22℃),減慢切片速度(從 5 mm/s 降至 2 mm/s),調整刀片角度至 15°,若仍黏連,可在刀片表面輕輕涂抹一層防黏劑(櫻花 SAKURA 切片防黏劑,貨號 A100)。
可能原因:使用了非低熒光 OCT 包埋劑、脫包埋劑、抗體濃度過高;
解決方法:更換櫻花 SAKURA 低熒光型 OCT 包埋劑(貨號 4585),延長 PBS 沖洗時間(每次 10 分鐘,共 3 次),降低抗體濃度(如從 1:100 稀釋至 1:200),同時在封閉液中加入 0.1% Tween-20,減少非特異性結合。